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Summary Genome Technology

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  • 23 novembre 2024
  • 22
  • 2024/2025
  • Resume
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MatthiVD
Cloning Recombinant screening
Transformation of plasmids = very inefficient.
1. Construction of recombinant DNA Does host contain vector?
a. Cutting: restriction enzymes
b. Pasting: DNA ligase  Ampicillin resistance gene in vector
2. Transformation  ampicillin kills all bacteria that do not
a. Ca-buffer + heat shock contain vector
b. Electroporation
Does vector contain insert?
c. Bacteriophages (100% efficient)
d. RECOMBINANT SCREENING  Selection systems
3. Proliferation o β-galactosidase gene
4. Isolation complementation
o suppressor tRNA gene




Restriction enzymes (endonucleases) Selection systems
e.g. HaeIII: Hemophilus aegypiticus III basic idea of all selection systems: insert interrupts
certain gene (RE cuts vector at multiple cloning
recognize usually 4-8bp palindrome sequence
site, the MCS, which is the recognition seq of the
notice difference between blund end and 5’ enzyme)
overhanging ends (sticky ends) below
β-galactosidase gene complementation (E. coli)

 Plasmid with insert: white colonies
 Plasmid without insert: blue colonies
 Interrupted gene: LacZ
 No β-galactosidase made
 No blue product being formed out of X-gal
Some enzymes have same overhangs Suppressor tRNA
(compatibility) e.g. MboI & BamHI
 Plasmid with insert: red colony
Length of the fragments cut depends on the  Plasmid withour insert: white colony
recognition sequence  Interrupted gene: suppressor tRNA
 Special type of host that has nonsense
 The longer the seq, the more rare, the
mutation -> mutant protein ->
longer the fragments
accumulation -> red colour
 Cs and Gs are more rare than As and Ts
 CG as a sequence (CpG islands) is very rare When gene is not interrupted, suppressor
because this gets methylated for tRNA is made, recognizing the stopcodon
epigenetic purposes inserting an AA, continuing translation -> WT
protein is made -> white colour
DNA ligase
Problem: recircularization!

Solved by:

 Dephorylation of vector at 5’ end (ligation
only works fosfate-OH)
 Use two different restriction enzymes

, Different vectors Lytic pathway
 Classic plasmid (e.g. pUC19) – 0-10kB  Cos-sites are 12bp 5’overhangs that seal in
 Lambda phage host -> circular DNA
o Insertion – 0-10kB  Early transcription facilitated by host RNA
o Replacement – 9-23kB polymerase
 Cosmid/Fosmid – 30-45kB  Coat proteins and replication machinery
 P1 phage – 70-100kB made -> replication of DNA and formation
 PAC – 130-150kB of virus particles
 BAC – 150-300kB  You get one long strain of viral DNA that is
 YAC – up to 4 000kB cut at the cos-sites
 M13 – max 3kB (ss)  Cell lysis of host cell -> virus free
 Phagemid – >10kB (ss)
Lysogenic pathway
 Att gene has homologue in E.col
 Recombination
 Integration into host chromosome
= provirus

pUC19
In vitro packaging!
 LacZ gene with MCS: β-galactosidase
recombinant screening = usage of a protein mix that contains coat
 Ori = origin of replication -> can replicate proteins for packaging DNA with cos-sites into
independently of host genome, but needs phage particles
host replication machinery
 AmpR: ampicillin resistance gene



Replacement vectors
 You replace the non-essential part by an
insert
 Note that Lambda phage NEEDS to contain
a chromosome of 37-50bp, not more/less!
o Advantage: when non-essential
part is cut, but no insert, no phage
particles are made
Lambda phage o Disadvantage: insert has under
 = classic example of bacteriophage limit of about 10bp and upper
 100% efficient transformation! limit of about 23bp
 DNA is ds and linear in bacteriophage and  Typically used for genomic DNA (gDNA)
gets circular in host
Insertion vectors
 37-50kb genome
o Cos-sites!  You leave the non-essential part as it is
o Protein coding part and just insert the insert
o Non-essential part with att gene*  You have to use a vector that is relatively
 Place for insert! short (37-40bp) -> 10kb space for insert
o DNA synsthesis and host lysis  Typically used for coding DNA (cDNA)
regulation part
 Lytic vs lysogenic pathway
 Replacement vs insertion vectors

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