Samenvatting van het Methoden in biomedisch onderzoek 3 gegeven in de 3de bachelor biomedische wetenschappen. Dit document bevat alle leerstof van de verschillende proffen + genomen notities. Met deze samenvatting behaalde ik een 14/20.
3.2.1.1 1ste generatie sequentiebepaling
Twee methoden: Maxam en Gilbert / Sanger (1977, Nobel prijs 1980)
Maxam en Gilbert = chemische klieving methode (historisch, ter
illustratie)
Fosfaat groep vervangen door radioactieve fosfaat
1 van de 2 labels verwijderen met restrictie enzymen
differentiële chemische klieving van nucleïnezuren in 4
verschillende reacties, gevolgd door scheiding volgens grootte op
gel en visualisatie via autoradiografie->-> bv 1 ste buisje->
breken na de eerste G, bij de tweede na een A of een G
nadeel: relatief korte fragmenten, niet helemaal specifiek
sequentie niet altijd éénduidig
Sanger sequencing = nieuwsynthese met dideoxy-keten terminatie
template/matrijs = clone of PCR amplicon bv van genomisch DNA-fragment
polymerase + primer + mengsel van 4 dNTPs + ddNTPs(Normale dNTP: 2’OH groep ontbreekt,
bij ddNTP: ook 3’ OH groep ontbreekt, dat is de OH groep die fosfodiesterverbindingen gaat
vormen in een DNA keten
reactie loopt door na inbouwen dNTP
reactie (keten) stopt na inbouwen ddNTP
juiste verhouding dNTPs/ddNTPs
scheiding strengen op gel of capillair -> elektroferogram-> Capillaire gelektroforese: kleine
fragmentjes (paars) komen eerst voorbij de sensor en worden eerst afgelezen, langste
fragmentjes laatst, dus van links naar rechts is van klein naar groot.
beperkt tot ~500 nt, moeite met herhalingen
voor betrouwbaarheid: best twee aparte reacties
(FW of RV primer) om beide richtingen af te lezen
Elektroferogram aflezen
1ste 30 bp niet afleesbaar
meestal 500-700 bp (max. tot 1000 bp) goede
sequentie afleesbaar
Phred score Q = -10*log10(P)
P = probabiliteit van foutieve base cal
-> Score van 10-> 1 op de 10 basen zijn fout
Minimaal een score van 20 voor een goede maar liefst 30
,Mutatiedetectie
Sanger sequencing gebruikt voor mutatiedetectie
Niet altijd even hoge pieken
sequentie-fout versus mutatie? -> forward en reverse
reacties ter bevestiging
doel: veel hogere throughput aan veel lagere kost massale DNA sequentiebepaling mogelijk
richtdoel: 1 humaan genoom op 1 toestel per dag voor <1000 USD (“thousand-dollar
genome”)
Ontwikkeling van nieuwe technologie met 3 pijlers:
parallelle detectie (Massive parallel sequencing)
cluster of polony = kopieën van een DNA template
klonale in vitro amplificatie van template (<> klassieke klonering)
duizenden-miljoenen kopieën van DNA template per cluster
multiplexing: vele clusters tegelijk (<> 1 template/reactie)
miniaturisatie van reacties
integratie van het proces (pipeline)
directe detectie (<> scheiding fragmenten via gelelectroforese)
Verschillende commerciële platformen
454/Roche, Illumina, SOLID, Ion Torrent,..
Zeer competitief
Snelle evolutie
Gebaseerd op 4 stappen:
Stap1. Aanmaak DNA library
Stap 2. Klonale in vitro amplificatie
Stap 3. Sequencing/sequentiebepaling
Stap 4. Data analyse
, Stap 1: aanmaak NGS(: next generation sequencing) DNA library
library = fragmentenbank = verzameling te sequencen templates
types DNA library:
whole genome sequencing (WGS)
Mate Pair libraries (zie verder)
whole exome sequencing (WES) of targeted sequencing:
aanrijking door hybridisatie aan probes (in oplossing of op array) (zie panel A) of PCR-
gebaseerd (zie panel B)
amplicon sequencing: PCR amplicons, bv. diagnostisch panel
cDNA library (RNA-seq – Zie Hfst RNA)
A:
Alle exons als oligos hybridiseren op het
plaatje, introns worden weg gewassen
Kan ook met beads gedaan worden
B:
PCR amplicons maken: PCR primers
maken tegen alle exons sequentie en
dan amplificeren we de exons
-> kan bij mondeling examen komen: hoe exon
sequentie doen?
Procedure voor aanmaak library:
input DNA -> kwaliteitscontrole (zie Hfdst 1.13)
hoeveelheid en concentratie: verschillende methoden
zuiverheid, bv spectrofotometrie A260/280 en A260/230
ratio
integriteit, bv capillaire elektroforese
random fragmentatie (sonicatie, nebulisatie, Dnase I,…)
vinden we altijd een overlap
end repair (zie ook Hfdst 1.13)
blunt ends maken (T4 DNA polymerase en Klenow
fragment)
5’ uiteinde fosforyleren (T4 polynucleotide kinase)
eventueel 3’ non-template A aanhechten (Taq
polymerase)
adapters aanhechten:
Voordelen van het kopen van samenvattingen bij Stuvia op een rij:
Verzekerd van kwaliteit door reviews
Stuvia-klanten hebben meer dan 700.000 samenvattingen beoordeeld. Zo weet je zeker dat je de beste documenten koopt!
Snel en makkelijk kopen
Je betaalt supersnel en eenmalig met iDeal, creditcard of Stuvia-tegoed voor de samenvatting. Zonder lidmaatschap.
Focus op de essentie
Samenvattingen worden geschreven voor en door anderen. Daarom zijn de samenvattingen altijd betrouwbaar en actueel. Zo kom je snel tot de kern!
Veelgestelde vragen
Wat krijg ik als ik dit document koop?
Je krijgt een PDF, die direct beschikbaar is na je aankoop. Het gekochte document is altijd, overal en oneindig toegankelijk via je profiel.
Tevredenheidsgarantie: hoe werkt dat?
Onze tevredenheidsgarantie zorgt ervoor dat je altijd een studiedocument vindt dat goed bij je past. Je vult een formulier in en onze klantenservice regelt de rest.
Van wie koop ik deze samenvatting?
Stuvia is een marktplaats, je koop dit document dus niet van ons, maar van verkoper larscoolen. Stuvia faciliteert de betaling aan de verkoper.
Zit ik meteen vast aan een abonnement?
Nee, je koopt alleen deze samenvatting voor €7,99. Je zit daarna nergens aan vast.
