Samenvatting van Celcultuur en immunochemie H1-13. Steeds gewerkt met de powerpoints in combinatie met het boek. Alles is duidelijk vermeld met foto's en soms op meerdere manieren uitgelegd ter verduidelijking. Na het leren van deze samenvatting, vond ik het examen (deel celcultuur) zeer goed te do...
examenvragen met antwoord: celcultuur en immunochemie en flowcytometrie
Samenvatting celcultuur
examenvragen met antwoord: celcultuur en immunochemie en flowcytometrie
Alles voor dit studieboek
(5)
Geschreven voor
Universiteit Antwerpen (UA)
Biomedische Wetenschappen
Celcultuur en immunochemie
Alle documenten voor dit vak (44)
Verkoper
Volgen
studentuabmw
Ontvangen beoordelingen
Voorbeeld van de inhoud
2e Ba BMW – celcultuur en immunochemie
Hoofdstuk 1: Inleiding ............................................................................................................................. 2
Hoofdstuk 2: Cel – en weefselculturen definities ................................................................................... 3
Hoofdstuk 3: soorten cellen en celculturen ............................................................................................ 6
Hoofdstuk 4: subcultivatie..................................................................................................................... 10
Hoofdstuk 5: cryopreservatie van dierlijke cellen ................................................................................. 13
Hoofdstuk 6: materialen en media........................................................................................................ 16
Hoofdstuk 7: De cultuuromgeving ........................................................................................................ 21
Hoofdstuk 8: sterilisatie en desinfectie ................................................................................................. 25
Hoofdstuk 9: bioveiligheid..................................................................................................................... 28
Hoofdstuk 10: Contaminaties ................................................................................................................ 29
Hoofdstuk 11: karakterisering ............................................................................................................... 31
Hoofdstuk 12: gespecialiseerde systemen ............................................................................................ 32
Hoofdstuk 13: toepassingen .................................................................................................................. 36
1
,Hoofdstuk 1: Inleiding
Geschiedenis
De eerste dierlijke culturen dateren van 1907. Er was een doorbraak in 1950 waar men 3 belangrijke
ontdekkingen heeft gedaan:
1. Ontdekking van antibiotica (besmetting voorkomen)
2. Gebruik van trypsine om cellen los te maken in cultuurflessen
3. Ontwikkeling van chemisch gedefinieerde cultuurmedia
Na deze ontdekkingen is de interesse in celculturen enorm toegenomen (blijkt uit publicatie
resultaten).
Voordelen van cel- en weefselkweekculturen
Controle van de omgeving
De fysicochemische (pH, Temperatuur, osmotische druk, O2 en CO2-spanning) en de fysiologische
(voedingsstoffen) parameters kunnen gecontroleerd worden. Cellen hebben media + serum + …
nodig om te kunnen delen.
Goede Karakterisatie en homogeniteit
De cel en weefselculturen zijn redelijk homogeen (geen orgaancultuur). De heterogene primaire
cultuur zal zich aanpassen naar een homogene cultuur. Dit komt omdat de cellen bij elke transfer
gemengd worden en er een selectie plaatsvindt van 1 bepaald celtype.
Na een bepaalde tijd ontstaan er ook mutaties en is het dus van belang dat je een cryostock hebt die
je kan gebruiken als deze mutaties optreden.
Kostprijs
Er zijn slechts kleine hoeveelheden monsters nodig om bepaalde testen te kunnen uitvoeren en het is
goedkoper dan proefdiermodellen omdat de aankoop en onderhoud ervan duur zijn. Er zijn hier ook
geen ethische belangen.
Beperkingen van weefselculturen
Expertise
Er moet een zeer steriele omgeving zijn voor het werken in cel en weefselculturen. Dit omdat
dierlijke cellen trager groeien dan bacteriën en schimmels.
Hoeveelheid
Je kan enkel hoeveelheden verkrijgen in de maat van x aantal gram.
Instabiliteit
Probleem voor de continue en normale cellijnen. De continue bezitten een aneuploïde aantal
chromosomen en de normale cellen hebben een beperkte levensduur waardoor ze eigenschappen
geleidelijk aan verliezen.
Cultuuromgeving versus in vivo
Celcultuur = 2D en in vivo = 3D. de specifieke cel interacties zijn dus ook verdwenen. De cellen in
cultuur zijn ook meer beweeglijk en er zijn meer delende cellen. Het wordt meestal homogeen, wat
in vivo meestal niet het geval is. Ook de regeling (zenuwen, hormonen) is hier afwezig. Het
metabolisme is constant en dus niet representatief.
2
,Hoofdstuk 2: Cel – en weefselculturen definities
Orgaanculturen
Deze worden gemaakt van embryonale organen of weefselfragmenten waarvan de 3D structuur
behouden blijft. Ook de functie wordt bewaard. Ze worden op een vloeistof-gas interfase gekweekt.
De cellen zelf kunnen niet delen, maar wel differentiëren. Je kan het weefsel goed karakteriseren via
histologie. Het weefsel heeft het vermogen tot angiogenese en wordt daarom vaak gebruikt in
kankeronderzoek.
Explant culturen
Deze weefsels worden rechtstreeks geïsoleerd uit het organisme. Je kan van elk weefsel type een
explant cultuur maken. Het weefsel wordt verkregen via een naaldbiopsie of via chirurgisch
uitsnijden (grote hoeveelheid). Het weefsel kan worden geperfuseerd (spoelen met zoutoplossing)
om zo contaminatie met bloed te vermijden. Een naaldbiopsie is makkelijker te verkrijgen, maar je
hebt dan minder dan 1 gram weefsel. De weefsel worden onmiddellijk in een steriele omgeving
gebracht en worden ondergedompeld in een medium.
Voordelen: cel – cel en cel – matrix interacties blijven behouden, makkelijk
manipuleerbaar
Nadelen: slechts tijdelijk houdbaar en de cellen kunnen de-differentiëren
(verlies van functie)
Primaire culturen
Deze cellen haalt men uit een explant cultuur. Ze kunnen dan als individuele cellen verder groeien.
Meestal komen in weefsel veel verschillende typen cellen voor en kan dit dus gezien worden als een
heterogeen mengsel (hier co – cultuur). Het voordeel hiervan is dat de interacties blijven bestaan
zoals ze in vivo voorkomen. Ze kunnen elkaar ook beïnvloeden door het uitscheiden van bepaalde
stoffen (= paracrien effect). Je kan ook bepaalde celtypen isoleren om zo een zuivere celcultuur te
maken.
Nadeel: Instabiliteit => onderlinge verhouding wijzigt, de – differentiatie, veroudering (= senesceren).
De ene cel heeft vaak een voordeel t.o.v. de andere waardoor de samenstelling wijzigt.
Eindige celculturen
Na subcultivatie is een primaire cultuur eigenlijk een
eindige celcultuur. Toch wordt de term primaire
cultuur nog gebruikt. Cellen kunnen maar een aantal
keer delen en gaan dan senesceren (door complexe
veranderingen in de cel). Dit komt door de
verkorting van de telomeren na elke celdeling. De
stamcellen zijn een uitzondering omdat ze een
verhoogde expressie van telomerase hebben.
Eindige cellijnen kunnen een 60-tal keer delen,
daarna zijn de telomeren te kort en stopt de
celdeling
Hayflick limiet
3
, Geïmmortaliseerde cellijnen = continue cellijnen
Door genetische veranderingen kunnen deze cellen blijven delen. Je kan ze dus onbeperkt in cultuur
houden. De genetische veranderingen kunnen opgetreden zijn in vivo (kankercel), spontaan
optreden of geïnduceerd worden. Dit noemt men dan transformatie en kan leiden tot immortalisatie
of leiden tot veranderingen zoals de celadhesie. Transformatie doe je door een weefselstukje kapot
te maken (met trypsine) om aparte cellen te verkrijgen.
De meeste continue cellijnen groeien als monolaag op een substraat. Als geen aanhechting nodig is,
kan je in een suspensie werken. De cellen in suspensie groeien sneller en kunnen in hoge densiteit
groeien. (Dit kan ook met WBC die geïmmortaliseerd zijn).
Organotypische celculturen
Primaire celculturen hebben geen cel – cel of cel – matrix interacties meer die normaal aanwezig zijn
in vivo. Om de cel – cel en cel – matrix interacties wel te kunnen bestuderen worden verschillende
cellijnen in contact gebracht met elkaar in een 3D structuur (= organotypische cultuur).
BLAUW: filterwell insert -> heeft een filter met
poriën. De cellen kunnen dan erop of eronder
groeien. Je hebt dan een 3D laag van cellen
(kunnen verschillende cellen zijn).
Zo kunnen er veel interacties ontstaan. Bv: een cel scheidt stoffen af die een andere cel kunnen
beïnvloeden.
Samenvatting
4
Voordelen van het kopen van samenvattingen bij Stuvia op een rij:
Verzekerd van kwaliteit door reviews
Stuvia-klanten hebben meer dan 700.000 samenvattingen beoordeeld. Zo weet je zeker dat je de beste documenten koopt!
Snel en makkelijk kopen
Je betaalt supersnel en eenmalig met iDeal, creditcard of Stuvia-tegoed voor de samenvatting. Zonder lidmaatschap.
Focus op de essentie
Samenvattingen worden geschreven voor en door anderen. Daarom zijn de samenvattingen altijd betrouwbaar en actueel. Zo kom je snel tot de kern!
Veelgestelde vragen
Wat krijg ik als ik dit document koop?
Je krijgt een PDF, die direct beschikbaar is na je aankoop. Het gekochte document is altijd, overal en oneindig toegankelijk via je profiel.
Tevredenheidsgarantie: hoe werkt dat?
Onze tevredenheidsgarantie zorgt ervoor dat je altijd een studiedocument vindt dat goed bij je past. Je vult een formulier in en onze klantenservice regelt de rest.
Van wie koop ik deze samenvatting?
Stuvia is een marktplaats, je koop dit document dus niet van ons, maar van verkoper studentuabmw. Stuvia faciliteert de betaling aan de verkoper.
Zit ik meteen vast aan een abonnement?
Nee, je koopt alleen deze samenvatting voor €7,99. Je zit daarna nergens aan vast.
